陰離子交換柱介質的選擇：
 

　　離子交換介質首先要考慮目的分子的大小，因為目的分子會影響其接近介質上的帶電功能集團，因此也會影響介質對目的分子的動力載量，從而影響其分離。
 

　　對于大多數純化步驟來說，建議從開始的階段使用強離子交換柱，可在摸索方法的過程中有一個寬的pH范圍。對于已知等電點的蛋白質，可根據其等電點來選擇。而未知等電點的蛋白質，在實際操作中常采用這樣的方法，先選擇一個陰離子交換劑，再選擇一個中性的pH緩沖液，將蛋白質樣品透析至pH7.0，然后過陰離子交換柱。根據過柱后的結果確定下一個使用的緩沖液pH。
 

　　陰離子交換柱流動相的選擇：
 

　　離子交換色譜的流動相必需是有一定離子強度的并對pH有一定緩沖能力的溶液。為了避免目的蛋白失活，使用緩沖液可穩定流動相的pH，使之在色譜過程中不發生明顯變化，同時可穩定目的分子上的電荷量，保證色譜結果的重要性。
 

　　選擇緩沖液一般按照以下原則：陽離子交換劑應選用陰離子緩沖液，可用檸檬酸鹽、磷酸鹽、醋酸鹽、甘氨酸鹽等;陰離子交換劑應選用陽離子緩沖液，可用烷基胺、Tris、氨基乙醇胺、乙二胺、咪唑等;起始緩沖液的濃度應盡可能低(<100mmol/L)這樣可以使色譜柱上更多的吸附分離物質;緩沖液應不含會影響被分離物質活性和溶解度成分，洗脫時盡量不采用pH梯度洗脫。
 

　　陰離子交換柱的選擇：
 

　　離子交換色譜通常選用粗短柱，即高徑比小的色譜柱。典型的離子交換柱高度在5~20cm，高徑比一般小于5。如果需要增加離子交換劑的體積，只能從增加柱的直徑而不能增加其高度。如果是連續梯度洗脫，可以適當增加柱的長度。